P63 clone 4A4
- REF : CM163C
- Clone: 4A4
- L'homologue p53 p63 code pour différents isotypes capables soit de transactiver les gènes rapporteurs p53 (TAp63), soit d'agir en tant que p53-négatifs dominants. p63 est détecté dans les cellules basales de la prostate normale, mais il est négatif dans les tumeurs malignes de la prostate. Ainsi, l'anticorps p63 peut être un outil précieux dans le diagnostic différentiel des tumeurs bénignes et malignes de la prostate et peut être utilisé dans un panel d'anticorps tels que HMW CK [34ßE12], PSA et PSAP. p63 peut jouer un rôle significatif dans le développement de la prostate en maintenant une population de cellules souches prostatiques. Une coloration des muscles striés peut être observée avec p63.
- CE IVD
- 1 x 1 mL
- 2-8°C
La proteine P63 joue un rôle critique comme régulateur de croissance et de développement des épithéliums. C'est un marqueur nucléaire des cellules basales prostatiques et des cellules myoépithéliales mammaires. Ce marqueur présente une meilleure sensibilité que la cytokératine 903. l’anti-P63 est disponible en multiplex avec la P504S. Le couplage P63/P504S (référence PPM201AA) augmente la sensibilité de détection des cancers. Notre anticorps anti-P63 clone 4A4 est CE-IVD pour une utilisation In vitro diagnostic. Références bibliographiques : 1. Yang A, et al. p63, a p53 homolog at 3q27–29, encodes multiple products with transactivating, death-inducing, and dominant-negative activities. Mol Cell. 1998 Sep; 2(3):305-16. 2. Signoretti S, et al. p63 is a prostate basal cell marker and is required for prostate development. Am J Pathol. 2000 Dec; 157(6):1769-75. 3. Paner GP, Luthringer DJ, Amin MB. Best practice in diagnostic immunohistochemistry: prostate carcinoma and its mimics in needle core biopsies. Arch Pathol Lab Med. 2008 Sep; 132(9):1388-96. 4. Humphrey PA. Diagnosis of adenocarcinoma in prostate needle biopsy tissue. J Clin Pathol. 2007 Jan; 60(1):35-42. 5. Mukhopadhyay S, Katzenstein AL. Subclassification of non-small cell lung carcinomas lacking morphologic differentiation on biopsy specimens: Utility of an immunohistochemical panel containing TTF-1, napsin A, p63, and CK5/6. Am J Surg Pathol. 2011 Jan; 35(1):15-25. 6. Tacha D, et al. A six antibody panel for the classification of lung adenocarcinoma versus squamous cell carcinoma. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 2012 May; 20(3):201-7. 7. Terry J, et al. Optimal immunohistochemical markers for distinguishing lung adenocarcinomas from squamous cell carcinomas in small tumor samples. Am J Surg Pathol. 2010 Dec; 34(12):1805-11. 8. Pu RT, Pang Y, Michael CW. Utility of WT-1, p63, MOC31, mesothelin, and cytokeratin (K903 and CK5/6) immunostains in differentiating adenocarcinoma, squamous cell carcinoma, and malignant mesothelioma in effusions. Diagn Cytopathol. 2008 Jan; 36(1):20-5. 9. Lerwill MF. Current practical applications of diagnostic immunohistochemistry in breast pathology. Am J Surg Pathol. 2004 Aug; 28(8):1076-91. 10. Hicks DG. Immunohistochemistry in the diagnostic evaluation of breast lesions. Appl Immunohistochem Mol Morph. 2011 Dec; 19(6):501-5. 11. Yeh IT, Mies C. Application of immunohistochemistry to breast lesions. Arch Pathol Lab Med. 2008 Mar; 132(3):349-58. 12. Center for Disease Control Manual. Guide: Safety Management, NO. CDC-22, Atlanta, GA. April 30, 1976 “Decontamination of Laboratory Sink Drains to Remove Azide Salts.” 13. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Protection of Laboratory workers from occupationally Acquired Infections; Approved guideline-Third Edition CLSI document M29-A3 Wayne, PA 2005. |